分子生物学
IVD分子诊断
细胞培养与分析
蛋白研究
细胞因子
重组蛋白
抗体
高通量测序建库
病原检测UCF系列
生物医药
工具酶
抑制剂激活剂与常用试剂
仪器
耗材
上样量、电压与电泳时间的优化策略:针对不同长度片段的电泳条件Q&A

8

2026-07-06

分享
收藏

核酸电泳是进行核酸研究的重要手段,是分离、鉴定和纯化核酸的主要方法。琼脂糖凝胶电泳因其分离范围较广,在实验中应用更为广泛。然而,电泳过程中常常会遇到各种问题,如条带不清晰、弥散、弯曲等。本文将针对上样量、电压与电泳时间这三个关键参数,结合不同长度DNA片段的特点,提供详细的优化策略。

一、上样量的优化策略

Q1:如何确定合适的上样量?

上样量是影响电泳结果的关键因素之一。上样量过多会造成加样孔超载,导致拖尾或弥散;上样量过少则会导致条带弱,难以观察。

A1:一般情况下,5 mm宽的梳子可以加入0.5 µg的核酸。具体加样量应根据加样孔的大小和核酸片段大小进行调整。建议根据说明书要求进行加样,或通过梯度实验确定最佳上样量。

以下是翌圣制胶梳子的每孔最大上样体积参考表:

表1:各规格制胶梳子对应的大小及上样体积

货号

厚度(mm)

齿数

梳齿宽度(mm)

齿距(mm)

加样体积(μL)

80841ES

0.75

7+7/14

6

3

22.5

80842ES

0.75

9+9/19

4.7

1.5

17.5

80843ES

1

12+12/27

3

1.7

15

80844ES

1.5

7+7/14

6

3

45

80845ES

1.5

9+9/19

4.7

1.5

35

80846ES

2

3/3/3/2

23/25.5/13/5/48

1.5

230/255/130/50/480

Q2:大分子条带为什么比小分子条带弱?

A2:这是正常现象。小分子条带因核酸量小,很容易与核酸染料结合达到饱和状态,而大分子条带与核酸染料结合未饱和,从而导致条带弱些。

解决办法:适量增加胶中核酸染料浓度,或适当减少核酸上样量,以保证核酸染料与核酸结合充分。

  

Q3:上样量过多会导致什么问题?

A3:上样量过多会造成加样孔超载,导致拖尾或弥散现象。此外,核酸分子上样量过高还会导致核酸与染料结合不充分,易造成条带弯曲现象。建议减少核酸上样量,对于未知浓度的样品,尝试1/2或1/3的常用上样量。或者参考所用Marker的上样量。

  

二、电压的优化策略

Q4:电泳时应该设置多少电压?

A4:建议电压为5-10 V/cm(长度指的是电泳槽正负极的距离),一般是110-130 V,最高不超过150 V。电压过小会使DNA条带发生扩散;电压过大则易导致条带弯曲拖尾现象。也参考所用Marker的电泳条件。

  

Q5:不同长度片段对琼脂糖胶浓度和电压有什么要求?

A5:大片段DNA(>5000 bp)建议使用较低电压(5-8 V/cm),以保证分离效果;小片段DNA(<1000 bp)可适当提高电压(8-10 V/cm),以缩短电泳时间。整体原则是大片段选择低浓度凝胶,用TAE缓冲电泳体系;小片段选择高浓度凝胶,用TBE缓冲电泳体系。

  

表2:琼脂糖凝胶浓度与DNA片段分离范围对照表

琼脂糖浓度

DNA片段分离范围

0.5%

1000-30000 bp

0.8%

800-12000 bp

1.0%

500-10000 bp

1.2%

400-7000 bp

1.5%

200-3000 bp

2.0%

50-2000 bp

三、电泳时间的优化策略

Q6:电泳时间应该如何控制?

A6:电泳时,注意观察溴酚蓝指示剂的位置。一般情况下,当溴酚蓝跑到凝胶的2/3处即可停止电泳。电泳时间一般为15min-45min,具体时间需根据DNA片段大小和凝胶浓度进行调整。

  

Q7:电泳时间过长或过短会有什么影响?

A5:电泳时间过长会导致DNA条带跑出凝胶(特别是小分子片段),或造成条带弥散;电泳时间过短则会导致分离不充分,相近大小的片段无法分开。建议根据指示剂位置判断电泳终点,切勿跑过头。

Q8:如何优化小分子片段的电泳条件?

A8:小分子片段(<500 bp)电泳时容易出现跑出凝胶或条带弱的问题。优化建议:(1)适当缩短电泳时间;(2)降低电压;(3)增加凝胶浓度(使用1.5%-2%琼脂糖);(4)选择大小合适的Marker;(5)可适当提高Marker上样量。

  

四、常见问题与解决方案速查表

表3:电泳常见问题速查表

问题

可能原因

解决方法

同样大小的DNA一起跑电泳,条带位置不一样

DNA分子构象不同,比如线性的和超螺旋结构,其电泳迁移率不同

正常现象。

DNA纯度或上样量不同,上样总质量大或有蛋白污染等,可能造成迁移速率不同

尽量保持一致上样量,可以参考对应Marker的条带的总量的;二次纯化样本等。

条带弱

上样量不够

梯度提高样品上样量

条带弥散(包括Marker)

电压过小

增加电压

琼脂糖溶解不充分

确认胶彻底溶解后溶液透明清亮,无油状。一般100 mL的1%琼脂糖凝胶的凝胶时间最好为30-40 min。

染料不均匀

加入核酸染料后充分摇匀,或改用泡染法。

缓冲溶液使用次数过多

建议一次性使用,或经常更换电泳缓冲液

条带弯曲或弧形

染料量不足

一般使用1×工作浓度

上样量过高

减少核酸上样量,对于部分Marker样本,稀释后效果更好。

电压过大

降低电压,建议电压为5-10 V/cm,最高不超过150 V

  

五、实验小贴士

1. 制胶:在煮沸凝胶溶液时,可用保鲜膜封口避免水分蒸发,同时要时刻关注溶液沸腾情况,建议1 min时打开微波炉观察一下,然后间隔10-30 sec看一下,防止过度沸腾喷溅。在加入核酸染料时,应当按照一个方向摇匀,避免气泡产生。同样地,在倒胶时要匀速缓慢避免气泡产生影响电泳。

2. 点样:点样时避免枪头穿破凝胶,若用的是mix,则要看是否已经添加了指示剂,一般如果mix有颜色,则无需再加loading buffer。

3. 结束电泳:注意根据指示剂的位置判断电泳终点,切勿跑过头。

4. 样品与Marker的上样体积应相近,这样更容易跑出理想的电泳结果。

  

希望以上内容能够帮助您解决核酸电泳中的常见问题。翌圣生物提供安全无毒的核酸染料、琼脂糖凝胶电泳相关设备及配套的DNA Marker,助您跑出完美的电泳图!

  

 

翌圣琼脂糖凝胶电泳完整解决方案

产品定位

产品名称

产品货号

规格

琼脂糖

Agarose琼脂糖

10208ES60

100 g

核酸染料

YeaRed Nucleic Acid Gel Stain (10,000× in Water)

10202ES76

500 μL

10202ES76

500 μL

DNA Marker

GoldBand DL2000 DNA Marker

10501ES60

100 T

GoldBand DL600 DNA Marker

10502ES60

100T

GoldBand DL5000 DNA Marker

10504ES60

100 T

GoldBand DL10,000 DNA Marker

10505ES60

100 T

GoldBand 100bp DNA Ladder

10507ES60

100 T

GoldBand 1 kb DNA Ladder

10510ES60

100 T

GoldBand Full-Scale DNA Ladder

10511ES80

1 ml

GoldBand DL15000 DNA Marker

10512ES60

100 T

GoldBand 50 bp DNA Ladder

10515ES60

100 T

GoldBand 100 bp plus DNA Ladder

10516ES60

100 T

GoldBand 200 bp DNA Ladder

10517ES60

100 T

GoldBand 500 bp DNA Ladder

10518ES60

100 T

 

联系我们
购物车
客服
转染试用