NGS技术在中草药DNA条形码与宏条形码中的应用
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2026-04-30
一、背景介绍
1.1 中草药鉴定的传统方法及其局限
中药材品种混乱及真伪鉴定方法欠缺,严重影响中医药的疗效和安全。传统的中草药鉴定方法主要依赖形态学分析、解剖学分析和化学成分指纹图谱等技术。然而,这些方法面临显著局限:一方面,环境条件、发育阶段或表型可塑性等因素会影响叶片形态和组织结构等性状,导致物种误判;另一方面,这些方法难以区分亲缘关系近的物种或品种,无法满足当前质量控制标准所要求的精度。
随着全球化和草药产品需求增长,掺假和替代风险日益加剧。比利时在1990年代曾因将有毒的Aristolochia fangchi误认为无毒的Stephania tetrandra,导致超过100名女性肾衰竭。全球植物性膳食补充剂市场预计将从2021年的405.4亿美元增长至2028年的805.4亿美元,市场规模的快速扩张使得建立可靠的中药材鉴定方法变得尤为迫切。
1.2 DNA条形码技术原理
DNA条形码技术是利用基因组中一段标准化的短DNA序列来进行物种鉴定的分子生物学方法。该技术的核心假设是:种内遗传变异通常小于种间遗传差异,因此可以通过比对目标序列与参考数据库来鉴定未知样本。在中草药鉴定领域,陈士林研究团队经过近十年的研究,完成了4000余种中草药及其混伪品的DNA条形码研究,创建了“中草药DNA条形码生物鉴定体系”,从基因层面解决了中药材与混伪品的鉴定问题。
1.3 DNA宏条形码技术的兴起
传统DNA条形码技术通常适用于单一物种样本的鉴定。然而,绝大多数中成药和中草药产品由多种药材混合而成,基于单一样品Sanger测序的传统方法难以应对混合物种的鉴定需求。DNA宏条形码技术的出现填补了这一空白。
DNA宏条形码是利用高通量测序技术(NGS)获得混合条形码扩增序列,再通过生物信息学分析手段来鉴定混合样本中物种组成的方法。该技术已广泛用于宏基因组学、动植物生物多样性等研究,并开始应用于传统草药的鉴定领域,为混合草药物种鉴定困难提供了有力的手段。
1.4 NGS在中药鉴定中的技术路径
下一代测序技术在中草药鉴定中的应用主要包括两条技术路径:扩增子宏条形码和鸟枪法宏条形码。
扩增子宏条形码是目前应用最为广泛的方法。该方法采用通用引物对混合样本中的特定条形码区域(如ITS2、psbA-trnH、matK、rbcL等)进行PCR扩增,然后对扩增产物进行高通量测序,通过序列聚类和比对分析鉴定混合样本中的物种组成。
鸟枪法宏条形码则是直接对混合样本的总DNA进行随机打断和测序,无需预先PCR扩增特定区域。该方法能够同时鉴定植物、真菌和动物成分,在一次测序中获得更全面的物种组成信息。例如,在Wuhu San的研究中,研究人员通过鸟枪法宏条形码对5个中成药样本进行了测序,共获得37.14 Gb数据,成功检测到ITS2、psbA-trnH、matK和rbcL等目标区域序列,并鉴定出多个药材成分及24个真菌属。
此外,三代高通量测序技术(如PacBio和Nanopore)因能够产生更长的测序读长,在解决序列拼接问题和区分复杂混合样本方面展现出独特优势,正在成为DNA宏条形码在混合中草药鉴定中不可或缺的技术方向。
二、DNA宏条形码在中草药鉴定中的应用
2.1 单一药材的真伪鉴别
DNA条形码技术已广泛应用于单一中草药基原植物的真伪鉴别。研究团队采用ITS2、psbA-trnH、matK和rbcL等国际通用的条形码序列,对蒙药材刺柏叶及其混淆品圆柏叶进行DNA提取和扩增,结果发现psbA-trnH序列能有效区分圆柏叶与刺柏叶。在黄精属药用植物鉴定中,研究人员应用通用引物扩增44份黄精属样品的叶绿体rbcL、matK、psbA-trnH及核ITS2和ITS序列,系统评价了各候选序列的鉴定能力。
2.2 混合中草药产品鉴定
混合中草药产品的物种鉴定是DNA宏条形码技术最具价值的应用方向之一。常见的中成药和中草药茶包含多种药材成分,传统方法难以有效区分。研究人员已建立了基于高通量测序的混合草药茶物种鉴定体系,通过设计两端加标签的ITS2引物序列,结合MiSeq高通量测序平台,实现了混合样品中多种原料物种的鉴定。
在中药复方制剂“五虎散”的研究中,鸟枪法宏条形码技术在两种模拟混合样本中成功检测到了所有标注成分,在三个商品样本中检测到了当归、防风、红花等药材成分,还发现了防风的掺假物种,证明了NGS技术在中药复方质量控制中的可行性。
2.3 加工后中成药产品成分检测
中成药产品通常经过高温、研磨、提取等深加工工序,使得DNA发生严重降解,给鉴定带来巨大挑战。针对这一问题,研究人员开发了接头连接介导PCR(adaptor ligation-mediated PCR)通用方法,在浓缩中药颗粒中成功扩增出不同长度的ITS2区域DNA片段,可用于鉴定浓缩颗粒中的目标物种,为深加工中草药产品的质量控制提供了新的解决方案。
2.4 中草药中污染微生物检测
NGS技术在检测中草药中污染微生物方面也具有重要应用。使用鸟枪法宏条形码,研究人员在Wuhu San样本中鉴定出24个真菌属,包括Aspergillus(曲霉属)等潜在产毒真菌,展示了该技术在同时检测药材主成分和污染微生物方面的双重能力。这一应用对于全面评估中草药产品的安全性和质量具有重要意义。
2.5 不同测序技术的比较
Sanger一代测序、二代高通量测序和三代高通量测序在混合中草药鉴定中各具优劣。Sanger测序准确度高但通量低,适合单一药材鉴定;二代测序通量高、成本相对较低,适合大规模混杂样品分析;三代测序读长长,有助于解决序列拼接和复杂基因区域解析问题。选择何种技术取决于具体的研究目标、样品复杂度以及经费预算。
三、常用分子标记与引物序列
3.1 中草药DNA条形码常用分子标记
在中草药DNA条形码鉴定中,常用的分子标记主要包括以下几类。
核基因组的ITS2序列是目前应用最为广泛的条形码标记。陈士林研究团队在国际上首次验证了约220 bp的核基因组序列ITS2具有理想的物种鉴定能力,该序列长度适中、变异位点丰富、通用引物扩增成功率高,已成为中草药鉴定的首选分子标记。
叶绿体基因组上的rbcL、matK和psbA-trnH是国际通用的植物条形码候选序列。其中rbcL测序成功率最高,可达100%,扩增较为稳定;matK序列获得率相对较低,但具有较好的物种区分能力;psbA-trnH属于叶绿体基因间隔区,变异速率较高,在某些类群的鉴定中表现出良好效果。
3.2 常用引物序列
根据《中国药典》和国际通用的DNA条形码研究方案,常用的引物及其序列如下。
ITS2常见引物(扩增核糖体DNA内转录间隔区2)及其参考序列:
|
引物名称 |
方向 |
引物序列(5′ →3') |
扩增长度 |
|
TS2-F(S2F) |
正向 |
ATGCGATACTTGGTGTGAAT |
~220-300 bp |
|
ITS2-R(S3R) |
反向 |
GACGCTTCTCCAGACTACAAT |
~220-300 bp |
psbA-trnH常见引物(扩增叶绿体psbA基因与trnH基因间的间隔区)及其参考序列:
|
引物名称 |
方向 |
引物序列(5′ →3') |
扩增长度 |
|
psbA-F |
正向 |
GTTATGCATGAACGTAATGCTC |
~340-660 bp |
|
trnH-R |
反向 |
CGCGCATGGTGGATTCACAATCC |
~340-660 bp |
matK常见引物(扩增叶绿体成熟酶K基因)及其参考序列:
|
引物名称 |
方向 |
引物序列(5' →3') |
扩增长度 |
|
matK-390F |
正向 |
CGATCTATTCATTCAATATTTC |
~700-800 bp |
|
matK-1326R |
反向 |
TCTAGCACACGAAAGTCGAAGT |
~700-800 bp |
rbcL常见引物(扩增叶绿体核酮糖-1,5-二磷酸羧化酶大亚基基因)及其参考序列:
|
引物名称 |
方向 |
引物序列(5′ →3') |
扩增长度 |
|
rbcL-a-F |
正向 |
ATGTCACCACAAACAGAGACTAAAGC |
~550-600 bp |
|
rbcL-a-R |
反向 |
GTAAAATCAAGTCCACCRCG |
~550-600 bp |
3.3 引物选择的注意事项
在实际应用中,引物的选择需要综合考虑目标药材类群、研究目的以及实验条件。不同引物在不同类群的扩增效率和鉴别能力存在差异。在4种龙胆科“地格达”类蒙药的鉴别中,研究者发现trnH-psbA序列不适合用于该四种植物的鉴别,而ITS序列则可作为良好的分子标记。因此,对于目标类群不明确的新样品,建议同时采用多条引物进行扩增,综合评估各序列的鉴定效果。
对于宏条形码分析,通常需要在引物5′端添加样本特异性标签(barcode index)以区分不同样本。标签序列一般由6~10 bp构成,用于Illumina MiSeq等高通量测序平台的文库构建和多路复用分析。
四、实验步骤
4.1 样品收集与准备
样品收集:收集待鉴定的中药材样品,包括单一药材或混合中成药。应根据研究目的采集足够数量的样品(建议每个物种至少5个重复个体)。对于形态学鉴定困难的材料,建议由分类学专家进行基原鉴定。
样品处理:新鲜或干燥的组织样品可采用硅胶干燥保存,以抑制DNA降解;对于含多糖多酚类物质的中药材,需采用专门优化的DNA提取方法;对于颗粒状或丸状中成药,应对样品进行充分研磨。
参考样品:建议同时采集基原植物的凭证标本,保存于标本馆,以备后续溯源和验证。
DNA提取:使用商用试剂盒(如MolPure® Mag Plant DNA Kit(18529ES,植物通用DNA提取)或MolPure® Mag Soil/Stool DNA Kit(18526ES磁珠法土壤/粪便DNA提取试剂盒)),严格按照说明书提取总DNA,并测定DNA浓度和质量(OD260/280在1.8–2.0之间为佳)。
DNA浓度测定:使用qubit定量设备(单通道核酸定量仪80571ES、83509ES,96通道核酸定量仪80575ES、83652ES)搭配qubit试剂(12642ES)测定浓度。
4.2 目标片段富集:PCR扩增(注,不同测序平台,扩增引物会有差异)
设置PCR反应:50 μL PCR体系中包括以下成分:
|
组分 |
体积(μL) |
终浓度 |
|
模板DNA |
1 ng -200 ng |
- |
|
正向引物(10 μM)* |
1 |
0.1 μM-0.5 μM |
|
2×Multiplex Long PCR Master Mix(17228ES) |
25 |
|
|
反向引物(10 μM)* |
1 |
|
|
无菌超纯水 |
up to 50 |
- |
配置好以上体系后,在PCR仪中设置以下PCR程序:
|
循环步骤 |
温度(℃) |
时间 |
循环数 |
|
热盖 |
105℃ |
On |
- |
|
预变性 |
98℃ |
30 sec |
1 |
|
变性 |
98℃ |
|
30-35(根据实验要求) |
|
退火 |
60℃* |
5 sec |
|
|
退火延伸 |
5~10 sec/Kb |
||
|
终延伸 |
72℃ |
2 min |
1 |
|
暂存 |
4℃ |
- |
- |
4.3 扩增产物0.9×纯化
1) 准备工作:将Hieff NGS® DNA Selection Beads(12601ES)磁珠由冰箱中取出,室温平衡至少30 min,配制80%乙醇。
2) 涡旋振荡或充分颠倒磁珠以保证充分混匀。
3) 吸取 45 μL Hieff NGS® DNA Selection Beads(0.9×,Beads:DNA=0.9:1)至一轮PCR产物中,室温孵育5 min。
4) 将 PCR 管短暂离心并置于磁力架中分离磁珠和液体,待溶液澄清后(约 5 min),小心移除上清。
5) 保持PCR管始终置于磁力架中,加入200 μL新鲜配制的80%乙醇漂洗磁珠,室温孵育 30 sec后,小心移除上清。
6) 重复步骤5,总计漂洗两次。
7) 保持PCR管始终置于磁力架中,开盖空气干燥磁珠至刚刚出现龟裂(不超过5min)。
8) 直接加入11 μL ddH2O,将PCR 管从磁力架中取出,涡旋振荡或使用移液器轻轻吹打至充分混匀,室温静置5 min。进入下一步反应。
4.4 电泳检测:
取1 μL PCR产物进行2%琼脂糖凝胶电泳(10208ES),确认目标条带明亮清晰,无非特异性扩增。
4.5.1 选择二代测序时:二次PCR(添加样品标签与测序接头)
二次PCR加标签:以纯化后的一次PCR产物为模板,使用带Illumina或者MGI接头的引物进行二次PCR扩增(13344ES),为每个样品添加独特的index标签,以便混合测序后区分不同样品。
纯化二次PCR产物:再次使用磁珠法纯化加标签后的文库产物(12601ES)。
4.5.2 选择三代测序时:直接搭配通用建库试剂即可完成三代文库构建(13306ES)。
建库完成后,对文库进行纯化以便后续上机测序(12601ES)。。
4.6 文库定量、混合与测序
浓度检测:使用qubit定量设备(单通道核酸定量仪80571ES、83509ES,96通道核酸定量仪80575ES、83652ES)搭配qubit试剂(12642ES)测定浓度。
等摩尔混合:将所有样品文库按等摩尔浓度混合,形成最终的测序pool。
高通量测序:将混合文库送检至NGS平台,常用平台包括Illumina NovaSeq、MGI T7或ONT、Cyclone等测序仪。
4.7 生物信息学分析
4.8 质量控制与验证
- 阳性对照:在测序数据中确认阳性对照物种是否被正确检出,以评估扩增、建库、测序和数据分析流程的可靠性。
- 阴性对照:阴性对照应无任何OTU/ASV检出。若检出超过10条reads,应判定为污染,需重新评估实验操作流程并剔除污染序列。
- 空白试剂对照:在DNA提取和PCR过程中分别设置空白试剂对照,用于识别试剂引入的外源DNA污染。
- 三重重复实验:对于关键样本建议设置3次重复,以评估实验的可重复性和技术变异性。
- ITS2与叶绿体序列交叉验证:对于ITS2难以区分的近缘物种,可采用叶绿体条形码(如psbA-trnH或matK)进行交叉验证,综合多个分子标记的结果做出最终鉴定。
五、挑战与未来展望
GS技术在DNA宏条形码领域的应用,突破了传统鉴定方法在混合样品分析中的瓶颈,为中草药的质量控制和真伪鉴别提供了强有力的分子工具。然而,该技术在实际推广中仍面临高成本、专业性强、标准化流程缺乏等挑战。当前中国药典已纳入“中药材DNA条形码分子鉴定指南”和“DNA测序技术指南”等规范性文件,表明分子鉴定技术正在从研究领域走向标准化应用。
未来的发展方向包括与AI驱动的数据分析技术深度整合、开发便携式测序设备用于田间快速鉴定,以及将DNA宏条形码与化学指纹图谱等多组学技术相结合,建立正交协同的鉴定体系。这些进展将进一步推动DNA宏条形码技术成为中草药质量控制体系中不可或缺的核心方法。
六、产品推荐
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实验步骤 |
产品名称 |
产品货号 |
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DNA提取 |
MolPure® Mag Plant DNA Kit |
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MolPure® Mag Soil/Stool DNA Kit磁珠法土壤/粪便DNA提取试剂盒 |
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COI扩增 |
Hieff NGS® Multiplex Long PCR Master Mix/ 长片段多重扩增酶 |
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二代建库 |
2× Ultima HF Amplification Mix |
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Illumina平台接头 |
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MGI平台接头 |
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三代建库 |
Hieff® LongSeq Amplicon End repair and Ligation Module |
13306ES |
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纯化磁珠 |
Hieff NGS® DNA Selection Beads |
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Qubit定量 |
1× dsDNA HS Assay Kit |





