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精准片段化赋能ChIP实验|翌圣微球菌核酸酶MNase,ChI 实验标配神器

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2026-05-29

染色质免疫沉淀ChIP(ChIP-qPCR/ChIP-Seq/ChIP-chip)是研究蛋白质与 DNA 相互作用、组蛋白修饰(H3K4me3、H3K27me3 等)、转录因子结合位点挖掘的核心经典实验。

整个 ChIP 实验成败,最关键卡点就在染色质片段化。传统超声破碎易过热、片段大小不均、破坏蛋白 - DNA 交联结构、背景高、重复性差;而翌圣微球菌核酸酶 (Micrococcal Nuclease, MNase, Cat#14547ES)凭借酶切温和、特异性强、片段均一可控,成为 ChIP 实验染色质片段化的黄金选择,完美替代传统超声,大幅提升富集效率与测序分辨率。

ChIP实验原理

  • 利用甲醛交联,将细胞内天然状态下目的蛋白(POI)与基因组 DNA共价固定,保留体内真实互作关系;
  • 通过MNase 酶切 / 超声破碎将染色质片段化至适宜长度;
  • 借助抗原 - 抗体特异性识别,富集结合目的蛋白的 DNA - 蛋白复合物;
  • 解交联后纯化 DNA 片段,通过qPCR 验证或高通量测序,定位蛋白在基因组上的结合区域。

图1. chip实验流程示意图

ChIP 实验全流程

1、细胞固定与交联

细胞培养至适宜密度,加入1% 甲醛37℃孵育 10 min,使蛋白与 DNA 发生共价交联,稳定体内真实互作状态;加入125 mM 甘氨酸,室温孵育 5 min,终止交联反应。

2、细胞核制备与 MNase 酶切片段化

裂解细胞并提取完整染色质,加入翌圣 MNase,37℃精准酶切 15-30 min,加入终浓度为0.025 M 的EDTA终止反应;冰上短时超声辅助破碎核膜,避免高温损伤,离心取上清,获得均一染色质片段。(建议预实验优化酶用量,电泳确认片段在150–1000bp区间)

初次实验优化建议:

① MNase的稀释:建议使用1×MNase Reaction Buffer梯度稀释,保障酶稳定性并降低管壁吸附。

② 反应体系推荐:

Reagent

Volume (20 µL system)

Volume (50 µL system)

MNase Reaction Buffer (10 ×)

2 µL

5 µL

MNase*

1 µL

2.5 µL

BSA (2 mg/mL)*

1 µL

2.5 µL

Sample

x µL

x µL

Water

(16-x) µL

(40-x) µL

Total Volume

20 µL

50 µL

注1:MNase可参考步骤1进行适当稀释,具体稀释倍数及使用量需要进行摸索。
注2:如果样品中不含蛋白质,则将BSA以1X的终浓度加入反应缓冲液中。如果是细胞样品,则无需添加BSA。

  

3、染色质免疫沉淀 ChIP

取部分染色质作为Input 对照,用于后续数据校准;加入特异性一抗,4℃缓慢旋转过夜孵育,再加入 Protein A/G 磁珠,捕获抗体-蛋白-DNA复合物;梯度高盐洗涤,高效去除非特异性结合。

  

4、DNA 洗脱、解交联与纯化

加入洗脱液,将复合物从磁珠上充分洗脱,65℃加热逆转交联;经苯酚 / 氯仿抽提、乙醇沉淀纯化 DNA,用 TE 缓冲液或无酶纯水溶解备用。

  

5、DNA 检测与可选蛋白验证

纯化后 DNA 可直接用于qPCR 定量或建库测序分析;如需验证蛋白,ChIP 产物直接加入 Loading Buffer 煮沸变性,即可进行 Western Blot 检测。

翌圣 MNase 适配 ChIP 实验核心亮点

替代超声首选:MNase替代传统机械超声打断方式,实现免疫沉淀后 RNA 的温和可控酶切,尤其适配卵母细胞、早期胚胎等低起始量珍稀样本。

高特异性酶切:专一切割核小体连接区 DNA,片段规整,稳定控制在150–1000 bp。

温和低损伤:37℃等温酶切,无超声高温破坏,完整保留蛋白抗原表位与 DNA 结构,尤其适配组蛋白修饰、转录因子等弱互作研究。

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产品名称

产品货号

规格

Micrococcal Nuclease(2000 U/µL)

14547ES

320/1600 KU

Hieff NGS® DNA Library Prep Kit 2.0

12927ES

8/24/96 T

Hieff NGS® DNA Selection Beads

12601ES

1/5/60/450 mL

1×dsDNA HS Assay Kit

12642ES

100/500 T

参考文献

[1] Brind’Amour J, Liu S, Hudson M, et al. An ultra-low-input native ChIP-seq protocol for genome-wide profiling of rare cell populations[J]. Nature communications, 2015, 6(1): 6033.

[2] Ji H, Jiang H, Ma W, et al. An integrated software system for analyzing ChIP-chip and ChIP-seq data[J]. Nature biotechnology, 2008, 26(11): 1293-1300.

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