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告别克隆低效困境!精准限制酶让您的重组实验“切”半功倍!

限制性内切酶(又称限制酶),是一种能精准识别并切割双链 DNA 特定核苷酸序列的酶类。自 1965 年首次发现后,其精准性、稳定性持续升级,从早期天然酶到 2010 年高效工程酶的突破,推动了分子克隆从传统酶切连接迈向自动化精准组装。作为 “分子剪刀”,它可按实验设计定向切割目的基因与载体,为分子克隆、mRNA 质粒线性化等多领域应用奠定了基础。本文将解析其在主流克隆技术中的作用,并结合产品性能数据为实验选择提供参考。

图1. 限制性内切酶发展史[1]

分子克隆技术是分子生物学核心,其发展为生命科学带来革命性突破,支撑着基因克隆与表达、病毒包装与基因治疗、细胞治疗、蛋白质组学研究、基因敲除、药物筛选、农业育种等多领域发展。

近年来,分子克隆技术历经多轮迭代升级,形成了多元化技术体系:一步法克隆凭借 “快速便捷” 的显著优势成为主流选择;Gold Gate 克隆依托多酶切 - 连接的精准调控机制,成为复杂载体构建的首选方案;而传统的粘性末端 / 平末端克隆,因操作简便、成本可控的特性,至今仍是基础克隆实验中的重要手段。接下来,我们将逐一解析限制性内切酶在这三类主流克隆技术中的核心应用。

一步法克隆:快速重组的核心工具

  • 原理:先通过限制性内切酶酶切或 PCR 制得线性化载体,并在插入片段正、反向PCR引物5’端引入15-25 bp的线性化载体末端同源序列,使得插入片段PCR产物5’和3’末端分别带有与线性化载体两末端对应的完全一致的序列。PCR产物和线性化载体在同源重组酶(T5 Exonuclease 切割5’末端形成粘性末端,DNA聚合酶将15-25 bp的同源序列补齐,Taq DNA Ligase 连接缺口)的作用下,经过一定的时间和温度即可进行转化,完成定向克隆。

  • 应用:依托限制性内切酶的特异性切割,适用于1-5片段快速重组,如目的基因克隆、质粒载体构建,广泛用于基因功能研究、蛋白质表达载体构建等基础科研。

图2. 一步法克隆技术原理图

Gold Gate 克隆:多片段组装的精准调控

  • 原理:先通过 PCR 在目的片段两端引入 IIs 型限制性内切酶(如 BsaI、BsmBI)的识别序列,再用该酶特异性识别并切割目的片段与载体的酶切位点(切割位置在识别序列外侧),随后在连接酶作用下实现目的片段与载体的无缝连接(可单片段或多片段重组,优化条件下能组装超 20 个 DNA 片段),最后将重组产物转化涂板并鉴定阳性克隆。

  • 应用:依托 IIs 型限制性内切酶的精准切割特性,适用于复杂载体构建场景,在多片段 DNA 组装、基因回路构建等分子克隆相关研究中发挥重要作用,满足科研中对多片段精准重组的需求。

图3. Gold Gate克隆技术原理图[3]

粘性末端 / 平末端克隆:基础克隆的经典高效方案

  • 原理:先通过 PCR 扩增获得目的 DNA 片段,再用限制性内切酶分别切割目的片段与载体,使其产生互补的粘性末端(含单链突出区)或平末端(无突出区),随后在连接酶作用下将目的片段与载体连接形成重组载体,最后将连接产物转化至宿主细胞,经涂板培养与阳性克隆鉴定得到目标重组载体。

  • 应用:依托限制性内切酶的特异性切割,因操作简便、成本可控,至今仍是基础克隆实验的重要手段,适用于基础科研中的常规目的基因克隆、简单载体构建等场景。

图4. 粘性末端 / 平末端克隆技术原理图

以上三种技术共同构成了当前分子克隆的核心方法体系,值得注意的是,以上三种克隆技术的高效运用,都离不开限制性内切酶的关键协助。作为中国分子酶领域的领军企业,翌圣生物成功攻克限制性内切酶的“卡脖子”难题,目前翌圣FuniCut®快速限制性内切酶已实现:

 精准酶切:媲美进口品牌,且兼容其缓冲液,即使过夜酶切,星号活性也极低。

✅ 方便快速:5-15min快速酶切,通用缓冲液。

✅ 操作简便:提供红色Color缓冲液,酶切产物可直接点胶电泳。

✅ 供应链保障+成本双赢:国产化生产,摆脱断供风险。

性能展示

酶切效果媲美进口品牌,并且与其buffer兼容性好

图5. 翌圣FuniCut® BamHI酶切效果与进口品牌同类型产品相当,并且与N*、T*品牌的buffer兼容性好

在FuniCut® Buffer中,5 min完成单、双和三酶切

图6. 在通用的FuniCut® Buffer中,5 min可完成单、双和三酶切,如EcoRI+KpnI+SmaI三酶切

通过严格的对比数据,翌圣生物的限制性内切酶在酶切效果、酶切速度和星号活性等性能均能媲美国际品牌,且翌圣生物FuniCut®系列限制性内切酶兼容进口品牌buffer,可实现无缝替换。我们为您提供以下全系列产品清单,覆盖常规科研、诊断与工业化需求,助您无缝替换进口酶,无需改变实验流程,即可获得一致甚至更优的酶切效果。

常用限制性内切酶选择指南

产品货号

产品名称

酶活 (U/μL)

规格 (T)

识别序列

15003ES76

FuniCut® BamHI

20

500T

5'-G↓GATCC-3'
3'-CCTAG↑G-5'

15005ES50

FuniCut® BsaI

20

50T

5'-GGTCTC(N)1↓-3'
3'-CCAGAG(N)5↑-5'

15010ES78

FuniCut® EcoRI

20

600T

5'-G↓AATTC-3'
3'-CTTAA↑G-5'

15012ES76

FuniCut® HindIII

100

500T

5'-A↓AGCTT-3'
3'-TTCGA↑A-5'

15015ES70

FuniCut® KpnI

100

200T

5'-GGTAC↓C-3'
3'-C↑CATGG-5'

15018ES30

FuniCut® NcoI

20

30T

5'-C↓CATGG-3'
3'-GGTAC↑C-5'

15020ES30

FuniCut® NheI

20

30T

5'-G↓CTAGC-3'
3'-CGATC↑G-5

15021ES50

FuniCut® NotI

20

50T

5'-GC↓GGCCGC-3'
3'-CGCCGG↑CG-5'

15023ES60

FuniCut® SacI

20

100T

5'-GAGCT↓C-3'
3'-C↑TCGAG-5'

15024ES70

FuniCut® SalI

20

200T

5'-G↓TCGAC-3'
3'-CAGCT↑G-5'

15028ES50

FuniCut® Spel

20

50T

5'-A↓CTAGT-3'
3'-TGATC↑A-5'

15033ES76

FuniCut® XbaI

20

500T

5'-T↓CTAGA-3'
3'-AGATC↑T-5'

15034ES76

FuniCut® XhoI

20

500T

5'-C↓TCGAG-3'
3'-GAGCT↑C-5'

15041ES25

FuniCut® PacI

10

25T

5'-TTAAT↓TAA-3'
3'-AAT↑TAATT-5'

15048ES30

FuniCut® Esp3I (BsmBI)

10

30T

5'-CGTCTC(N)1↓-3'
3'-GCAGAG(N)5↑-5'

15052ES50

FuniCut® DpnI

20

50T

5'-GAm6↓TC-3'
3'-CT↑Am6G-5'

15056ES25

FuniCut® AgeI

20

25 T

5'-A↓CCGGT-3'
3'-TGGCC↑A-5'

除以上常用限制性内切酶产品,翌圣现有超100种限制性内切酶,满足超90%常用需求。扫描下方二维码,即可获取翌圣限制性内切酶全系产品资料,文件包含:货号、产品名称、酶活、切割位点、buffer兼容活性等信息。

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产品类型

产品名称

货号

一步法克隆试剂盒

Hieff Clone® Universal II One Step Cloning Kit

10923ES

TOPO克隆试剂盒

Hieff Clone® Universal Zero TOPO TA/Blunt Cloning Kit

10906ES

PCR mix

2×Hieff® Ultra-Rapid II HotStart PCR Master Mix

10167ES

高保真酶

Hieff Canace® Long PCR Master Mix (With Dye)

10166ES

DNA连接酶

Hieff® Gold T4 DNA Ligase

10300ES

Taq DNA Ligase

11051ES

T5核酸外切酶

T5 Exonuclease

14538ES

TOPO异构酶

Topoisomerase I

14971ES

感受态细胞

DH5α Fast Chemically Competent Cell F DH5α化学感受态

11803ES

核酸染料

YeaRed Nucleic Acid Gel Stain (10,000× in Water)

10202ES

琼脂糖

Agarose

10208ES

DNA marker

GoldBand DL2000 DNA Marker

10501ES

参考文献
[1] Di Felice F, Micheli G, Camilloni G. Restriction enzymes and their use in molecular biology: An overview[J]. Journal of biosciences, 2019, 44(2): 38.
[2] Johansson S. The use of Gibson Assembly for DNA cloning[J]. 2022.
[3] Biró J B, Kecskés K, Szegletes Z, et al. Golden EGG, a simplified Golden Gate cloning system to assemble multiple fragments[J]. Scientific Reports, 2024, 14(1): 25288.

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