接头二聚体的形成与控制——动物疫病NGS检测中的常见问题

接头二聚体的形成与控制——动物疫病NGS检测中的常见问题

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2026-10-09

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一、研究背景

在动物疫病NGS检测中,无论是宏基因组测序(mNGS)还是靶向测序(tNGS),接头二聚体(Adapter Dimer)都是一个让实验人员头疼的问题。接头二聚体是测序接头在文库构建过程中自连形成的小分子DNA片段(通常<150 bp),它们会占用宝贵的测序reads,降低有效数据率,严重时甚至可能导致整个检测失败。

对于动物疫病检测来说,这个问题尤为关键——很多动物疫病病原(如非洲猪瘟病毒ASFV、猪繁殖与呼吸综合征病毒PRRSV等)的基因组较小,载量可能较低,如果大量测序reads被接头二聚体消耗,检测灵敏度将显著下降。本文将深入剖析接头二聚体是如何形成的、在动物疫病NGS检测中会造成什么影响,以及如何通过实验设计和操作优化来有效控制接头二聚体的产生。

二、接头二聚体是如何形成的

1、接头自连的化学基础     

 

NGS文库构建中使用的接头(Adapter)是两端带有特定序列的寡核苷酸片段。以Illumina测序平台为例,一个典型的接头包含以下组件:

P5/P7序列:与Flow Cell上的寡核苷酸互补,用于文库与Flow Cell的桥式扩增

 Index/Barcode序列:用于多样本混合测序时的样本识别

测序引物结合位点:用于正反向测序引物结合启动测序

粘性末端:用于与目标DNA片段连接

在接头连接反应中,如果两个接头的粘性末端(通常带有T碱基突出)相互配对并被T4 DNA连接酶催化,就会形成接头二聚体。这个反应与接头和目标DNA片段的连接是竞争关系——当接头浓度过高或目标DNA不足时,接头自连的概率就会增加。

2、影响接头二聚体形成的因素 

 

接头浓度:过高或过低都会影响文库质量。当接头浓度过高时,两个接头分子相遇并连接的概率增加,形成大量的接头二聚体;当接头浓度过低时,虽然二聚体减少了,但与目标DNA的连接效率也会下降,导致文库产量不足。

DNA插入片段浓度:当用于连接的DNA插入片段(经过末端修复和加A尾后的DNA)浓度过低时,接头与DNA片段连接的机会减少,而接头与接头之间的自连机会相对增加,导致二聚体比例升高。

反应条件:连接反应的温度、时间、酶活性等都会影响二聚体的形成。温度过高会导致连接酶活性下降,时间过短则反应不充分。

纯化步骤:在接头连接后,如果磁珠纯化不完全,未连接的游离接头会残留在反应液中,这些游离接头在后续的PCR步骤中会被扩增,形成大量的接头二聚体产物。

3、不同建库步骤中的二聚体来源

直接接头连接(适用于mNGS):在mNGS的文库构建中,通常使用酶法或化学法进行末端修复和加A尾后,直接进行接头连接。这一步产生的接头二聚体主要来源于未消耗的接头分子。

PCR扩增引入(适用于tNGS):在tNGS的多重PCR扩增步骤中,如果引物设计不当或PCR条件优化不足,除了会产生引物二聚体外,还可能产生接头-引物二聚体或完全接头二聚体。

Index hopping导致的"伪二聚体":在多样本混合测序中,如果index设计不够优化或建库过程中发生index hopping,可能导致样本间交叉污染,形成看似二聚体但实际是污染的问题。

三、接头二聚体对动物疫病NGS检测的影响

1、有效数据率下降     

 

这是接头二聚体最直接的影响。当文库中含有较高比例的接头二聚体时,测序仪会产生大量<100 bp的reads,这些reads在后续的数据分析中通常会被过滤掉,造成测序资源的浪费。研究表明,当接头二聚体比例超过10%时,有效数据率将显著下降;如果二聚体比例超过30%,可能造成50%以上的测序资源浪费。

2、检测灵敏度下降   

 

对于动物疫病检测来说,灵敏度是至关重要的。很多疫病病原在感染早期的载量极低(如ASFV在血液中的拷贝数可能只有数十拷贝/毫升),需要高深度的测序才能检出。如果大量测序reads被接头二聚体消耗,实际用于检测病原的测序深度将大幅下降,导致灵敏度降低甚至漏检。

3、数据分析干扰   

 

接头二聚体产生的reads虽然通常会被质控流程过滤掉,但在一些特殊情况下(如二聚体与某些病原序列存在同源性),可能会干扰数据分析,造成假阳性或假阴性的结果。

4、测序成本增加   

 

为了获得足够的有效数据量,研究人员不得不多上机一些文库或增加测序数据量,这直接导致了检测成本的增加。在大规模动物疫病监测或临床诊断中,这个问题的影响尤为显著。

四、接头二聚体的控制策略

策略一:优化接头与DNA的摩尔比,这是最基本也是最有效的控制方法。接头与DNA插入片段的摩尔比需要根据样本类型和文库构建方案进行优化:过高会增加二聚体,过低会降低连接效率。

策略二:磁珠纯化优化:在接头连接后进行磁珠纯化,去除未连接的游离接头。或PCR后进行双轮磁珠纯化(比如第一轮0.8x去除大片段,第二轮0.6x去除小片段和二聚体)。

五、接头二聚体的检测与质控

1、Bioanalyzer/TapeStation检测     

 

这是最直观的检测方法。接头二聚体在Bioanalyzer图谱上呈现为<100 bp的尖锐峰,与引物二聚体峰(通常约80-100 bp)和主文库峰(通常200-600 bp)可以明显区分。

2、qPCR定量比较     

 

如果Qubit定量(测总DNA)和qPCR定量(测有效文库片段)的结果差异超过3倍,说明可能存在大量的非文库DNA(如二聚体、杂质)。

3、测序质控数据评估     

 

下机数据中可以通过以下指标评估二聚体比例:

Adapter:接头序列占比

Duplicates:重复率

Mean Insert Size:平均插入片段大小

六、翌圣产品推荐

应用方向

推荐产品

产品编号

文库片段筛选与纯化

Hieff NGS® DNA selection Beads (Superior Ampure XP alternative)DNA纯化分选磁珠

12601ES

RNA文库纯化

Hieff NGS® RNA Cleaner RNA纯化磁珠

12602ES

mNGS DNA建库

Hieff NGS® OnePot Flash DNA Library Prep Kit/ 低背景病原快速酶切DNA建库试剂盒

12316ES

tNGS多重扩增建库

Hieff® Multiplex RT-PCR Kit(一步法RT-mPCR试剂,低背景菌版本)

12950ES

dsDNA定量

1× dsDNA HS Assay Kit 即用型dsDNA qubit定量试剂

12642ES

ssDNA定量

ssDNA Assay Kit 单链DNA qubit定量试剂盒

12645ES

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