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细胞转染 | BmN家蚕卵巢细胞系DNA转染案例(质粒DNA 7000bp)

实验所用试剂清单

试剂名称

货号

Hieff Trans® LipoBooster 3000 Transfection Reagent Lipo3000转染试剂

40801ES

细胞培养与传代(T25)

细胞计数:从培养箱取出细胞,细胞悬液吹打混匀,使用细胞计数仪检测细胞活率及密度。

细胞传代(直接稀释法):根据计数结果,直接进行细胞传代。

细胞传代(半换液法):若待传代细胞上清较黄,取出细胞后,使细胞继续保持静置状态,将培养板微微倾斜,使细胞沉于底部,用移液器将细胞上清液去除,再补充新鲜培养基进行计数传代。

细胞传代(离心换液法):若细胞状态不好,可以通过低速离心进行传代;将待传代细胞悬液移至无菌离心管中,200 ×g 离心3-5分钟,新鲜培养基重悬并计数传代。

细胞转染(6孔板

一、 实验前准备

1. 细胞准备:转染前24小时,取细胞悬液,进行细胞计数,传代,每孔加入2 mL完全培养基(指培养基总量)。

2. 试剂准备:

o 质粒DNA: 使用高纯度(如试剂盒提取)的质粒DNA,质粒浓度最好高于1000 ng/μL。

转染试剂: 将LipoBooster 3000试剂在4°C冰箱外静置回温,使用前轻轻吹打。

无血清培养基: 准备用于稀释DNA和转染试剂的基础培养基(如Opti-MEM)。

二、 转染复合物制备

1. 稀释DNA:取一个无菌离心管,加入125 μL的opti-MEM无血清培养基,再加入2.5 μg质粒DNA,轻轻混匀。然后再加入5 μL的Enhancer增强剂,吹打混匀,获得稀释的质粒DNA溶液。

2. 稀释转染试剂:取另一个无菌离心管, 125 μL的opti-MEM无血清培养基,再加入5 μL的LipoBooster 3000转染试剂轻轻吹打混匀。

3. 混合孵育: 将稀释好的DNA溶液加入稀释的转染试剂管中,轻轻吹打混匀。室温下静置孵育10-15分钟,以形成稳定的DNA-转染试剂复合物。

三、 细胞转染

1. 加复合物: 将孵育好的DNA-转染试剂复合物逐滴均匀地加入到细胞培养基中,轻轻摇晃培养板使其混匀。

2. 孵育: 将细胞放回37°C、5% CO₂培养箱中培养。

四、 转染后处理

1. 换液: 转染后4-6小时,仔细观察细胞状态。若出现明显毒性,应吸弃部分上清培养基,并补充对应体积的新鲜预热的完全培养基。若细胞状态良好,可以不换液。

2. 检测: 继续培养24-72小时后,根据实验设计(如表达荧光蛋白、检测mRNA或蛋白水平)进行转染效率或功能检测。

小贴士:

1、如果转染后有显著的细胞毒性,可以在6h换液或将增强剂用量减半,可以避免细胞毒性问题;

2、如果转染效率比较低,可以通过提高转染试剂用量,能够有效提高转染效率;

3、稀释质粒和转染试剂,最好使用opti-MEM;

4、转染试剂兼容血清和双抗,但是稀释质粒和转染试剂用的必须是无血清无双抗培养基。

实验结果分析

 

在BmN家蚕卵巢细胞系转染质粒DNA(7000bp),用翌圣 LipoBooster 3000及进口品牌P转染,并通过荧光显微镜观察转染效率。

进口品牌P

翌圣lipoBooster3000

数据来源:浙江理工大学

使用翌圣 LipoBooster 3000转染试剂在BmN家蚕的卵巢细胞系转染质粒DNA,结果显示,翌圣 LipoBooster 3000 转染试剂能够高效转染。

不同培养皿LipoBooster3000转染试剂用量使用指南

培养容器

培养基用量

DNA转染

siRNA转染(终浓度50 nM)

培养基体积

复合物中Opti-MEM体积

DNA(μg)

LipoBooster 3000转染试剂(μL)

Enhancer转染增强剂(μL)

siRNA体积(初始浓度20 μM)

LipoBooster 3000转染试剂(μL)

96孔

100 μL

2×5 μL

0.1

0.2

0.2

0.25 μL

0.3

48孔

250 μL

2×12.5 μL

0.25

0.5

0.5

0.625 μL

0.75

24孔

500 μL

2×25 μL

0.5

1

1

1.25 μL

1.5

12孔

1 mL

2×50 μL

1

2

2

2.5 μL

3

6孔

2 mL

2×125 μL

2.5

5

5

5 μL

7.5

60 mm

5 mL

2×250 μL

5-10

10-20

10-20

12.5 μL

20

10 cm

10 mL

2×500 μL

15-25

30-50

30-50

25 μL

40

T25

6 mL

2×250 μL

6-12

12-24

12-24

15 μL

24

T75

15 mL

2×750 μL

20-40

40-80

40-80

37.5 μL

60

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