实验所用试剂清单
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试剂名称 |
货号 |
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Hieff Trans® LipoBooster 3000 Transfection Reagent Lipo3000转染试剂 |
40801ES |
细胞培养与传代(T25)
细胞计数:从培养箱取出细胞,细胞悬液吹打混匀,使用细胞计数仪检测细胞活率及密度。
细胞传代(直接稀释法):根据计数结果,将细胞按照5E6 cell/mL左右进行细胞传代。
细胞传代(半换液法):若待传代细胞上清较黄,取出细胞后,使细胞继续保持静置状态,将培养板微微倾斜,使细胞沉于底部,用移液器将细胞上清液去除,再补充新鲜培养基进行计数传代。
细胞传代(离心换液法):若细胞状态不好,可以通过低速离心进行传代;将待传代细胞悬液移至无菌离心管中,200 ×g 离心3-5分钟,新鲜培养基重悬并计数传代。
细胞转染(6孔板)
一、 实验前准备
1. 细胞准备:
2. 试剂准备:
o 质粒DNA:
o 转染试剂:
o 无血清培养基:
二、 转染复合物制备
1. 稀释DNA:取一个无菌离心管,加入125 μL的opti-MEM无血清培养基,再加入2.5 μg质粒DNA,轻轻混匀。然后再加入5 μL的Enhancer增强剂,吹打混匀,获得稀释的质粒DNA溶液。
2. 稀释转染试剂:
3. 混合孵育: 将稀释好的DNA溶液加入稀释的转染试剂管中,轻轻吹打混匀。室温下静置孵育10-15分钟,以形成稳定的DNA-转染试剂复合物。
三、 细胞转染
1. 加复合物: 将孵育好的DNA-转染试剂复合物逐滴均匀地加入到细胞培养基中,轻轻摇晃培养板使其混匀。
2. 孵育: 将细胞放回37°C、5% CO₂培养箱中培养。
四、 转染后处理
1. 换液: 转染后4-6小时,仔细观察细胞状态。若出现明显毒性,应吸弃部分上清培养基,并补充对应体积的新鲜预热的完全培养基。若细胞状态良好,可以不换液。
小贴士:
1、如果转染后有显著的细胞毒性,可以在6h换液或将增强剂用量减半,可以避免细胞毒性问题;
2、如果转染效率比较低,可以通过提高转染试剂用量,能够有效提高转染效率;
3、稀释质粒和转染试剂,最好使用opti-MEM,效果会优于DMEM;
实验结果分析
在sf9昆虫卵巢细胞转染质粒DNA(6738bp),用翌圣 LipoBooster 3000及进口品牌T2000转染,并通过荧光显微镜观察转染效率。
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进口品牌T2000 |
翌圣lipoBooster3000 |
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数据来源:浙理工绍兴生物医药研究院 |
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使用翌圣 LipoBooster 3000转染试剂在sf9昆虫卵巢细胞转染质粒DNA,结果显示,翌圣 LipoBooster 3000 转染试剂能够高效转染。
不同培养皿LipoBooster3000转染试剂用量使用指南
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培养容器 |
培养基用量 |
DNA转染 |
siRNA转染(终浓度50 nM) |
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培养基体积 |
复合物中Opti-MEM体积 |
DNA(μg) |
LipoBooster 3000转染试剂(μL) |
Enhancer转染增强剂(μL) |
siRNA体积(初始浓度20 μM) |
LipoBooster 3000转染试剂(μL) |
|
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96孔 |
100 μL |
2×5 μL |
0.1 |
0.2 |
0.2 |
0.25 μL |
0.3 |
|
48孔 |
250 μL |
2×12.5 μL |
0.25 |
0.5 |
0.5 |
0.625 μL |
0.75 |
|
24孔 |
500 μL |
2×25 μL |
0.5 |
1 |
1 |
1.25 μL |
1.5 |
|
12孔 |
1 mL |
2×50 μL |
1 |
2 |
2 |
2.5 μL |
3 |
|
6孔 |
2 mL |
2×125 μL |
2.5 |
5 |
5 |
5 μL |
7.5 |
|
60 mm |
5 mL |
2×250 μL |
5-10 |
10-20 |
10-20 |
12.5 μL |
20 |
|
10 cm |
10 mL |
2×500 μL |
15-25 |
30-50 |
30-50 |
25 μL |
40 |
|
T25 |
6 mL |
2×250 μL |
6-12 |
12-24 |
12-24 |
15 μL |
24 |
|
T75 |
15 mL |
2×750 μL |
20-40 |
40-80 |
40-80 |
37.5 μL |
60 |
文末福利
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