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捕获测序分哪几种,各自的应用方向是什么

捕获测序分哪几种,各自的应用方向是什么

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2026-10-21

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在高通量测序(NGS)飞速普及的当下,全基因组测序(WGS)、全转录组测序早已成为基因组学研究的常规手段。但海量数据、高昂成本、冗余信息过多三大痛点,始终制约着大样本队列、精准位点解析、低丰度片段检测等研究的推进。在此背景下,捕获测序(靶向富集测序) 应运而生。它只针对基因组中感兴趣的区域进行分离与富集,不仅检测灵敏度更高,还能大幅降低后续的数据分析工作量。

举例来说,外显子组区域仅占全基因组的1%左右,但却包含了绝大部分的已知致病突变。将外显子区域分离出来后单独测序,后续分析就能降低99%的工作量。不仅如此,目标区域的大幅减少可实现更高的测序深度,检测极限可低至0.1%。在精准医疗时代,这种“小而精”的靶向捕获测序已成为科学家的重要选择。

PART 01
主流捕获方法概览

常见的目标区域捕获方法主要有三种:杂交捕获(Hybrid Capture)、多重PCR(Multiplex PCR)以及分子倒置探针(Molecular Inversion Probes, MIP) 。三种方法的核心区别在于富集原理和适用场景的不同。

杂交捕获的特点是捕获区段大、均一性好,可覆盖较大的基因组区域。多重PCR的特点是操作简便、成本较低,适合小规模靶向检测。分子倒置探针的特点则是特异性好,且捕获完成后直接完成建库。

PART 02
杂交捕获:大规模靶向测序的“主力军”
01
原理与流程

杂交捕获基于核酸分子碱基互补配对原理。研究者针对目标区域设计特异性探针,然后将打断后的基因组DNA加上测序接头,与探针进行杂交,将目标区域捕获下来,回收后直接构建高通量测序文库。

根据探针的存在状态,杂交捕获又分为固态杂交和液态杂交两种。固态杂交以芯片为载体,将探针固定在芯片上,文库与芯片上的探针杂交后洗脱未结合片段。

图1:Roche NimbleGen捕获技术流程示意图

液态杂交则将生物素标记的探针置于液相中,杂交后通过链霉亲和素修饰的磁珠将探针吸附,再通过变性分离探针与目标区段。

图2:Agilent SureSelect捕获技术流程示意图

02
优势与局限

杂交捕获最大的优势是捕获区段大,且探针均一性好。它能够处理大型Panel和复杂基因组区域,对降解样本(如FFPE组织)也有较好的适应性。与扩增子方法相比,杂交捕获产生的PCR重复更少,对结构变异的检测能力更强。

局限性在于特异性相对较差。由于样本是随机打断的,探针捕获时可能与部分目标片段杂交,导致含有部分目标区段的文库被捕获,产生非目标片段。此外,杂交捕获对DNA起始量要求较高,流程较复杂、成本较高。

03
应用方向

杂交捕获是大规模靶向测序的首选方案。典型应用包括:

全外显子组测序(WES):捕获全部蛋白编码区域,是遗传病研究和临床诊断的常用方法;

肿瘤Panel测序:覆盖数百个癌症相关基因,用于肿瘤分型、靶向治疗选择和MRD监测;

遗传病筛查:针对数千个已知致病基因进行深度测序;

罕见变异发现:由于不依赖PCR引物设计,不容易遗漏突变;

病原微生物检测:如病毒全长测序和耐药基因监测。

PART 03
多重PCR:快速精准的“轻骑兵”
01
原理与流程

多重PCR通过设计多对特异性引物,在一次PCR反应中同时扩增多个目标区域。扩增产物可直接用于测序文库构建,流程简单快捷。多个样本可通过添加barcode或index进行混合测序。

图3:IDT多重扩增子建库示意图

02
优势与局限

多重PCR的核心优势在于快速、简便、成本低。它需要的起始DNA量少,适合低投入样本;操作流程短,适合需要快速周转的场景;并且产生更高比例的目标区域读段,测序资源利用率高。

局限性同样明显:随着靶标数量的增加,引物间的干扰会加剧,扩增均一性难以控制,通量受限;对高GC含量区域、复杂序列以及基因融合等结构变异的检测能力有限;且引物结合区域的SNP可能干扰扩增。

03
应用方向

多重PCR最适合小规模、聚焦型的靶向检测。典型应用包括:

  • 热点突变检测:如肿瘤驱动基因的已知热点区域筛查;

  • 基因分型:SNP分型、CRISPR编辑验证等;

  • 遗传病已知位点检测:针对特定致病基因的快速筛查;

  • 病原体靶向测序(tNGS):适用于基因组较小的病毒检测;

  • 植物遗传多样性分析:研究不同品种或种群的遗传差异。

PART 04
分子倒置探针:特异性与效率的“平衡者”
01
原理与流程

分子倒置探针(MIP)采用一种独特的设计:探针两端(H1和H2)能与目标区段退火,中间则包含一段通用序列。退火后,利用DNA聚合酶将探针缺口补齐,再用DNA连接酶将缺口处连接,形成一个完整的环状探针。随后通过外切酶消化游离的探针,完整环状探针中的目标序列即可利用通用序列作为引物进行扩增,产物可直接作为二代测序文库。

图4:MIP捕获技术流程示意图(From Wikipedia)

02
优势与局限

MIP技术的优势首先体现在特异性上,由于探针的两端需要同时与目标区域的两侧序列互补结合,非特异性结合的概率被大幅降低。其次,MIP在捕获的同时完成了文库构建的核心步骤,省去了繁琐的末端修复、加A、接头连接等操作。此外,MIP对降解程度较高的样本(如FFPE组织来源的DNA)具有更好的兼容性。不过,MIP技术在捕获目的序列的过程中,捕获的目的序列不能过长,否则空间效应可能会影响探针与靶标序列的成功杂交,对实验结果产生影响。因此适用于小规模DNA片段的研究(≤5 Mb)。此外,对于一些位点如高GC含量区目前还无法设计探针,因此捕获效率较差。

03
应用方向

MIP技术适用于需要高特异性的靶向测序场景。典型应用包括:

大规模SNP分型与药物基因组研究;

单基因遗传病与罕见病靶向重测序;

病原微生物与可变剪接研究等。

PART 05
三种捕获技术比较

三种靶向捕获方法各有其适用的条件,研究人员在实际选择时需从多个维度进行综合评估。下表从不同的维度对比了三种技术各自的特点。

PART 06
   总结   

三种靶向捕获方法各有其不可替代的技术定位和适用场景。杂交捕获凭借其大通量、高均一性和对复杂变异的检测能力,成为大规模靶向测序和全外显子组分析的主力工具。多重PCR以快速、简便、低成本的显著优势,在聚焦型检测和临床快速筛查中占据重要地位。分子倒置探针则在高特异性和中等通量需求之间找到了独特的平衡点,尤其适合低频变异检测和病原体分型等应用。

没有哪一种方法是“万能”的。选择的核心依据在于实验目标与资源条件——靶标规模、样本量、预算、时间要求以及对检测灵敏度和特异性的需求共同构成了决策矩阵。对于大多数实验室而言,更为务实的做法是根据自身的研究方向和应用需求,选择最适合的主流技术路线,并在熟练掌握后根据实际需要拓展其他方法。理解三种技术的底层逻辑和适用边界,才能在设计实验时做出科学合理的选择。

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